連関資料 :: 実験
資料:324件
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ラットの腸管吸収実験
- ●方法 ＜腸管の吸収実験＞ ?腸管の摘出 安楽死させたラットを開腹し、小腸を途中で切らないように注意しながら取り出す。生理食塩水で血液や汚物を洗い流す。 ?反転小腸の作成 プリントの図のとおり、木綿糸で縛り、切断し、小腸を反転する。 反転腸管内にKRPB１mlを注入し、端を木綿糸で縛る。 ?反応液の準備 100ml三角フラスコにラベルする。対応するフラスコに各液５mlずつ入れる。 ?反応開始 反転小腸が２本揃ったら、A液から順次、30℃で30分振とうしながら、インキュベートで反応を行う。反応スタート ?反応停止と内液の調整 15mlチューブに内液を出す。反応ストップ 除タンパクし、遠心をする。 ?外液の調整 外液をスピッツ管に取り、除タンパクし、遠心をする。 ＜チロシンの定量（ローリー法）＞ ?チロシン標準溶液の調整 吸光度を測り、標準線を作る。 ?ローリー法 上記実験の内液、外液をローリー法で測定し、吸光度を測定する。チロシン標準線からそれぞれのサンプルのチロシン濃度を求める。
- レポート 解剖生理学 腸管吸収実験 栄養学
550 販売中 2006/01/21- 閲覧(10,230)
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トランジスタ回路の基礎実験
- １．実験の目的 接合型トランジスタの静特性をエミッタ接地、ベース接地についてそれぞれ実際に測定する。また、静特性をトランジスタの直流等価回路から考える。 ベース接地電流増幅率とエミッタ接地電流増幅率の関係を求める。 最後に、エミッタ接地増幅回路について適切なバイアス点を計算により求め、実験を行い適切なバイアス設計ができるようにする。 ２．実験回路解析と実験結果 実験器具 定電圧源 キクスイ電気 2台 電圧計 ミリアンペア計 マイクロアンペア計 発振器 KENWOOD AG-203D オシロスコープ KENWOOD CS-4035 電圧プローブ KENWOOD 抵抗 実測値 30 kΩ 10 kΩ 10 kΩ 10 kΩ 2 kΩ 1 kΩ 29.97 kΩ 9.90 kΩ 10.03 kΩ 9.97 kΩ 2009Ω 1002Ω コンデンサ 許容差 1μF 1μF W W トランジスタ 東芝トランジスタ シリコンNPNエピタキシャル型 2SC1815 実験１：エミッタ接地、ベース接地静特性をそれぞれ実測し、特性例のような結果が得られることを確認する。また、この特性と次の直流等価回路の関係を説明する。 ａ．理論解析 まず、エミッタ接地について考える。 エミッタ接地直流等価回路は次のようになる。 (1) 特性 ベース・エミッタ間に電圧を加えるとベース電流がどのように流れるかを示している。（入力特性） 直流等価回路から、「ベース・エミッタ間はダイオードである」ということが分かる。ダイオードは一定の電圧(0.7V程度)を超える急激に電流が流れる特性を持っている。同様に、トランジスタではベース・エミッタ間が一定の電圧（シリコントランジスタの場合は0.6V程度）を超えると急激に電流が流れ始める特性を持つことがわかる。 (2) 特性 ベース電流がコレクタ電流にどのように伝えられるかを示している（電流伝達特性）。 である。エミッタ側のダイオードは順方向、コレクタ側のダイオードは逆方向であるから、 はよく流れるが、 はわずかである。このときの の比をエミッタ接地電流増幅率という。 (3) 特性 コレクタ・エミッタ間に電圧を加えるとコレクタ電流がどのように流れるかを示している（出力特性）。逆方向のダイオードに流れる電流の量は、限界があるので を大きくしても変化しなくなる。 次に、ベース接地について考える。 ベース接地の直流等価回路は次のようになる。 (4) 特性 コレクタ電圧 を一定としたときのグラフである。 エミッター・ベース間は順方向にバイアスされている。よって、直流等価回路から、「ベース・エミッタ間はダイオードである」ということが分かる。特性はｐｎ接合の順方向特性と同じである。 (5) 特性 で は小さく、 と がほとんど等しいため、ベース接地の電流増幅率αが１に近いことを意味している。 (6) 特性 エミッタ電流 を一定としたときのグラフである。 に関係なく の値は のみで決まる。特性より、コレクタの出力インピーダンスは非常に大きい。 ｂ．実験回路の詳細と実験方法 エミッタ接地 (1) 特性 の値を、5V，10V，20Vと設定し、 を測定する (2) 特性 の値を、5V，10V，20Vと設定し、 を測定する。 (3) 特性 を10μF，20μF，30μFと設定し、 を測定する。 ベース接地 (4) 特性 を5V，10V，20Vと設定し、 を測定する。 (5)
- レポート 理工学 エミッタ接地 ベース接地 バイアス
- 550 販売中 2007/04/22
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観察法と実験法について
- 1．観察法について 観察法とは、人間や動物の行動を観察し、記録・分析していくことで、ある行動がなぜ生じたのかという因果関係や規則性・特徴などを捉えていく方法である。 観察法を実施するときは、観察者の考えや偏見が反映されやすいので、その点に注意しなければならない。そうならないためには、以下の点に注意する。 ?観察者に検証しようとしている仮説の性質や、研究の目的を知られないようにする。 ?何を観察しようとしているのかを、はっきりさせるような構造化されたチェックリストを用いて、観察を記録する ?評定者間信頼性のために、少なくとも2人の観察者で観察し、観察結果を比較する。 観察する環境によって、自然観察法と実験的観察法に分かれる。他にも、参加観察法がある。以下に、それぞれの観察法について、述べる。 (1)自然観察法〜できるだけ自然な環境の中で客観的・正確に記述していこうとするものである。目的とする行動が起こっている現場で何が起こっているのかを記録する。 特徴は、以下のとおりである。 ?高い生態学的妥当性がある。 ?故意に引き起こせば、非論理的なことであっても、自然な状況で起こることを観察できる。 ?新しい分野を研究する上で、自然観察は有効な研究方法である。自然観察から仮説を導き出すことができ、実験によって研究できる。 問題点は、以下のとおりである。
- レポート 心理学 観察法 実験法 独立変数
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炭の浄化作用実験
- 準備物 溶液（コーラ・グレープジュース・ラーメンスープ・米のとぎ汁）・ビーカー・脱脂綿・炭・金槌・軍手・ペットボトル・金ザル・すり鉢 実験の目的 炭の浄化作用を身近な溶液を利用して観察する。また溶液によって炭の浄化具合の違いを観察し、学習する。その際、ろ紙による浄化作用と区別できるよう、ろ紙のみを利用した実験も行い、比較検討し考えを深めることができる。 様子 手順 注意点 炭を細かく（１?角）砕く。 炭は大きすぎても小さすぎてもいけない。金ザルでこした程度の大きさが丁度よい。金槌で怪我をしないよう気をつける。 ペットボトルを半分に切り、脱脂綿を敷き詰める。（細かい炭のかけらが混入するのを防ぐため） 脱脂綿はしっかり敷き詰めること。 脱脂綿の上に細かく砕いた炭を２〜３センチの高さまで入れる。 こぼれ落ちないように注意すること。 炭の上に再度脱脂綿を敷き詰める。 ２つのビーカーに溶液を入れる。片方の溶液をペットボトルにゆっくり回すように流す。 １回では分かりづらい場合がある。 ２回ほど繰り返してその色合いを調べる。 溶液は飲んだりしてはいけない。
- レポート 教育学 炭 浄化作用 実験
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糖質化学実験
- 糖質化学実験 （10月27日～11月24日） 目的 糖の構成単位である単糖は、ポリアルコールにアルデヒド基もしくはケトン基が付いているという構造的特色がある。このため、還元性を持ち、単糖が二つ連なった二糖や、複数個連なったオリゴ糖なども還元性を示す。しかし、通常炭水化物などに含まれる糖は、単糖が10個以上、多くは100個以上連なった多糖の形で存在しており、還元性が殆ど見られない。これは、還元末端が一つだけ存在するも、その構成している糖の重合度が高いからであるが、この多糖を酸や酵素などで加水分解してやるとオリゴ糖や二糖などといった比較的分子量の小さい断片に分かれて還元性を示すようになり、その還元末端の数を調べることで、加水分解率を測ることが出来る。 今実験では、米粉、籾殻粉末、セルロースパウダー、デンプンの各試料において、フェノール硫酸法を用いて全糖量を定量し、ソモジー変法を用いて還元糖量を定量する。それぞれを検量線を用いてグルコース相当重量として算出し、各試料中の糖含有率と加水分解率を算出することを目的とする。 フェノール硫酸法の原理は、糖類が強酸と反応してフルフラール誘導体を形成し、それが各種フェノール誘導体やアミノ誘導体と反応して呈色物質を生成することを利用している。強酸として硫酸、呈色試薬にフェノールを用いると糖類で共通の呈色反応になる。この方法の利点は多糖を強酸処理すると加水分解を受けるので、前もって多糖を加水分解しておく必要がなく、そのまま全糖量の測定に用いることが出来るという点である。また、特徴としては、たんぱく質の共存による影響が少なく、糖タンパク中の糖量の測定にも用いることが出来ること、操作が簡便ということがあり、注意点としては、濃硫酸の滴下法に条件があること、フェノール量と呈色の強さに相関関係があり、加えるフェノール量が一定でなければならないことなどが挙げられる。 ソモジー変法の原理としては、還元糖をアルカリ性銅試薬と混合して加熱するとCu2Oが生ずる。これが硫酸酸性下で過ヨウ素酸とヨウ化カリウムから生成するヨウ素を定量的に消費するので、残存ヨウ素をチオ硫酸ナトリウム溶液で滴定して消費したヨウ素量から還元糖量を求めることが出来る。この方法での注意点は、アルカリ性下の糖・銅試薬の反応なので、生成Cu2O量と遊離還元基数とに比例関係がある。そのため多糖類の定量などの場合には予め加水分解をしておく必要があること、糖の種類によって反応の進行にやや時間差があること、Cu2Oが酸化を受けやすいので実験誤差が出やすいことである。 今実験のもう一つの目的は、ペーパークロマトグラフィーを用いて試料中に含まれる糖の構成を調べ、それぞれの試料中の構成糖を比較することである。 ペーパークロマトグラフィーは分配クロマトグラフィーであり、固定相が濾紙中の水、移動相が展開溶媒となる。試料成分は固定相と移動相の間で分配を繰り返しながら移動する。試料成分が両相に分配される場合の分配係数Kは次のように表せる。 固定相と移動相の体積をそれぞれVS及びVMとすると、分配平衡に達した時の両相間の試料成分量の比kRは次のように表される。 このときのkRを分配比と呼ぶ。試料成分は全量のうち だけ移動相中にあり、それが移動相と同じ速度vで移動するので、その成分全体は の速度で移動する。成分ごとにこれらの分配比や移動速度は異なるので、物質の構成成分の分離・抽出にはクロマトグラフィーが適している。また、今回は分離能を上げるため、二次展開を行う。これは、ペーパー
- レポート 農学 還元糖の定量 ペーパークロマトグラフィー ソモジー変法 フェノール硫酸法
- 550 販売中 2007/07/02
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